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Journal of Embryo Transfer 2015; 30(3): 195-200
Published online September 29, 2015
https://doi.org/10.12750/JET.2015.30.3.195
Copyright © The Korean Society of Animal Reproduction and Biotechnology.
Hyun Kim1,2, Sang-Rae Cho3, Dong Kyo Kim1, Changyong Choe1, and Hwan-Hoo Seong1,†
1Animal Genetic Resources Research Center, National Institute of Animal Science, RDA, Namwon 590-832, Korea,
2Dept. of Veterinary Physiology, Graduate School of Agricultural and Life Sciences, The University of Tokyo, Tokyo 113-8657, Japan,
3Hanwoo Research Station, National Institute of Animal Science, RDA, Pyeongchang 25340, Korea,
*본 논문은 농촌진흥청 공동연구사업(과제번호 PJ009418)에서 연구비를 지원 받았습니다.
Correspondence to: Corresponding author :
The objective of this study was to evaluate the toxicities of permeable cryoprotectants and finally to establish the cryopreservation method of surplus embryos obtained during assisted reproductive technology (ART). Toxicities of permeable cryoprotectants, dimethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol (EG), Glycerol, and 1,2-PROH were investigated using a murine embryo model. Female F-1 mice were stimulated with gonadotropin, induced ovulation with hCG and mated. Two cell embryos were collected and cultured after exposure to among DMSO, EG, Glycerol, and 1,2-PROH. Embryo development was evaluated up to the blastocyst stage. The total cell count of blastocysts that were treated with DMSO and Glycerol at the 2-cell stage was significantly lower than that were treated with EG (81.1±15.1), 1,2-PROH (88.0±21.1) or the control (99.9±21.3) (
Keywords: cryoprotectant, DMSO, EG, toxicity, embryo, apoptosis
초기배아를 비롯하여 세포나 조직, 개체 등과 같은 생물학 적 재료를 형태와 기능적인 변화가 일어나지 않은 상태로 저 온에서 장기간 보관하고, 필요한 시기에 융해하여 동결보호제 (cryoprotective agents: CPAs)를 제거한 후, 세포의 발달이 계 속 이뤄질 수 있는 생리적 환경상태로 되돌리는 과정을 동결보 존(cryopreservation)이라 한다(
동결 보존 후, 초기배아의 생존율에 있어 동결 방법만큼이 나 중요한 것은 동결 및 융해 과정 중에 사용되는 동결보호제 의 종류, 농도 및 처리 시간이다(
배양액은 glutamine(0.1 mM/ml)이 포함된 KSOM(Lawitts and Biggers, 1993)을 사용하였고, 침투성 동결보호제의 비교 대 상인 DMSO, EG, 1,2-PROH 그리고 Glycerol은 1.5 M Leibovitz- L15(Gibco BRL, UK)를 기본배양액으로 사용하였다. 모든 배양 액은 0.5% antibiotics(Streptomycine sulfate, S-9137; Penicillin- G, P-3032, Sigma, USA)를 첨가한 다음, 삼투압 측정기(Osmomat 030, Gonatec, German)를 이용하여 삼투압을 280 mOsmol/kg으 로 보정하였다. 삼투압을 보정하고 나서 0.2 μm의 여과기(Minisant 17597, Sartorius, Germany)로 제균하면서 14 ml tube (2001, Falcon, USA)에 분주한 다음 4℃에서 보관하였다. 배양액은 95 % 이상의 습도, 37℃ 및 5% CO2를 유지하고 있는 배양기(3154, Foma, USA)에서 6시간 이상 평형시킨 다음 이용하였다. 본 실 험에 이용된 그 외 시약들은 Sigma(St Louis, Mo, USA)사 제 품을 구매하여 사용하였다.
수정란 준비본 연구에 사용된 실험동물은 일본 도쿄대학교 농업생명과 학연구과 수의과학대학 동물실험 윤리위원회의 A-10-1214 승 인 하에 진행하였으며, 항온 및 항습이 유지되면서 낮 12시간, 밤 12시간이 조절되는 실험동물 사육실에서 물과 먹이를 자유 롭게 섭식시켜 사육한 ICR계 흰 생쥐를 사용하였다. 암컷은 생 후 5∼9주령을 사용하였고, 수컷은 11∼12주령의 생식능력이 확인된 것을 사용하였다. 난포 성장을 촉진시키기 위해 생후 6 주령의 암컷 F1 hybrid mice(C57BL ♀/6×CBA ♂) 생쥐에 10 IU의 PMSG(pregnant mare’s serum gonadotropin, Sigma)를 복 강 주사하여 과배란을 유도하였다. PMSG 주사 후, 48시간 때 10 IU의 hCG(human chorionic gonadotropin, Sigma)를 복강에 주사한 후, 수컷과 합사하여 교배를 유도하였다. 이튿날 아침 암컷의 질전을 통하여 교배 여부를 확인하고, 질전이 확인된 개 체만을 분리 사육하였다. hCG 주사 후, 48시간째에 교배가 확 인된 개체만을 경추탈골 방법으로 죽인 후, 외과적 수술 방법 으로 난관을 떼어내었다. 그리고 인슐린 주사기를 이용하여 난 관 관류법으로 2-세포기의 배아를 획득하였다.
배 발달을 위한 기본 배양액은 KSOM을 제조하여 사용하였 으며, 단백질원은 0.3% Bovine Serum Albumin(이하: BSA)를 첨가하여 사용하였다. 동결보호제의 독성 평가를 위한 배양액 은 Leibovitz-L15에 1% BSA를 포함한 기본 배양액에 각각의 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M 1,2-PROH 그리고 1.5 M Glycerol를 각각 첨가하여 사용하였다.
실험 30분전에 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M 1,2-PROH 와 1.5 M Glycerol의 배양액을 실내온도로 보정하였다. 획득한 2-세포기 수정란을 실온에서 60분 동안 각각의 동결보호제가 포함된 배양액에 넣어 처리하였다. 처리가 끝난 수정란은 배 발 달 배양접시(Tissue culture dish, 60×15 mm, Corning 25010) 로 옮기기 전에 배 발달 배양액에 3회 세척을 실시하여 수정 란에 남아있는 동결보호제를 깨끗이 제거한 후, KSOM 배양 액 20 μl 소적을 만들고, oil을 피복한 배양접시로 옮긴 후 37 ℃, 5% CO2 배양기 내에서 5일간 체외배양을 통해 배 발달을 유도하였다. 대조군은 동결보호제를 처리하지 않은 수정란을 이용하여 검토하였다.
2-세포기에서 얻은 수정란을 실온에서 60분 동안 동결보호 제에 노출한 후, 배양기로 옮겨 24시간 주기로 배반포 발생시 까지 배 발달율을 관찰하였다. 96시간 동안 배양하여 형성된 배반포는 bis-benzimide(Hoechst 33342)로 염색하여 세포수를 계수하여 배 발달율을 조사하였다. 동결보호제에 노출시킴으로 써 나타나는 배 발달율에 미치는 영향을 알아보고자 PMSG 주사 후 96시간을 기준으로 세포수가 50개 미만은 A군, 50∼80개 미만은 B군으로, 80개 이상인 C군으로 나누어서 분석하였다.
세포수 조사핵을 염색하기 위하여 bis-benzimide를 10 μg/ml로 희석하 여 빛이 차단된 곳에 배아를 5분간 처리한 후, 0.3% BSA가 함 유된 PBS로 3회 이상 세척한 후, 배아를 slide glass위에 mounting한 후, 형광현미경을 이용하여 관찰하였다.
통계적 분석본 시험에서 얻어진 모든 자료들의 통계 분석은 Statistical Analysis System(SAS release ver. 8.2, 2002)의 General Linear Model(GLM) procedure를 이용하여 분산분석을 실시하였고, 처 리구 간에 유의성은 Duncan’s multiple range-test(Duncan, 1955) 를 이용하여 5% 수준에서 검정하였으며, 각 요인들의 상관관 계의 유의성 검정은 Pearson’s correlation coefficient를 활용하 였고,
배 발달율은 대조군에서 92.0%가 정상적으로 발달하였으며, DMSO 처리군에서는 A군이 12.3%, B군이 33.8%, C군이 53.9 %로, EG 처리군에서는 A군이 7.7%, B군이 29.2%, C군이 63.1 %로, Glycerol 처리군에서는 A군이 11.1%, B군이 30.1%, C군 이 49.5%로, 1,2-PROH 처리군에서는 8.6%, 31.2%, 65.9%로 각각 나타났다. Fig. 1과 같이 정상 배 발달율은 대조군보다 동 결보호제 처리군(DMSO, EG, Glycerol, 1,2-PROH)에서 유의 하게 낮게 나타났으나(
Comparison of embryo development after 60 minutes exposure of 2-cell murine embryo to 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH. Data represent mean ± S.D.; a:
Comparison of hatching rates of embryos that were exposed to cryoprotectants at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± S.D.; a:
배반포 세포 수는 DMSO 처리군(65.0±13.0)과 EG 처리군 (81.1±15.1), Glycerol 처리군(62.1±27.0), 1,2-PROH 처리군(88.0 ±21.1) 모두 대조군(99.9±21.3)에 비해 유의하게 적게 나타났다 (
Comparison of total cell number of murine blastocysts which were treated with 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH, and Leibovitz solution (control) at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± SEM; a:
세포사멸된 세포수를 분석한 결과에서도 DMSO 처리군(14.7 ±1.3), EG 처리군(12.1±1.1), Glycerol 처리군(15.2±1.8)과 1,2- PROH 처리군(11.5±1.3) 모두 대조군(6.5±0.7)에 비해 유의하게 높게 나타났으며(
Comparison of the apoptotic rates of cells in blastocysts which were treated with 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH for 60 min at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± SEM; a:
포유류 및 인간배아의 동결보존 과정에서 성공률에 영향을 주는 요인들로는 동물의 종, 동결 시 배아의 발달단계와 배아의 형태(
일반적으로 세포는 세포주기에 따라 체크포인트를 두어 내 재적인 결함 등을 치유 및 회복하는 기전(
아직까지 동결보호제의 독성에 대해 많은 부분이 밝혀지지 않고 있으므로 동결보호제의 독성을 알아보는 연구가 추가되 어야 할 것으로 생각된다. 특히, 생식 세포(germ cells)에 대한 성장과 발달에 있어서 저해 효과를 최소화 할 수 있도록 분자 수준에서의 비치사성 동결보호제 손상을 밝힐 필요가 있다고 생각된다. 또한 동결보호제의 알려지지 않은 독성을 감소시키 기 위해서 가능하면 동결보호제에 노출되는 시간을 최소화하 는 것이 중요하다고 사료된다.
본 연구에서 배아의 생식세포 동결에 가장 흔히 쓰이고 있 는 침투성 동결보호제(DMSO, EG, Glycerol, 1,2-PROH)의 독 성을 비교하고자 생쥐 수정란 모델을 이용한 실험을 하였다. 생후 6주령의 암컷 생쥐 F1 hybrid mice에 10 IU의 PMSG를 복강 주사하여 과배란을 유도하고, 2-세포기 배아를 획득하고 침투성 동결보호제(DMSO, EG, Glycerol와 1,2-PROH) 각각 실 온에서 60분간 노출시킨 후, 배양을 하였다. 배반포의 전체 세 포수는 2-세포기 단계에서 DMSO(68.1±24.1), EG(68.1±24.1), Glycerol(81.2±27.0), 1,2-PROH(68.1±24.1) 침투성 동결보호제 처리군은 대조군에 비해 유의적으로(99.0±18.3)(
(중심 단어: 동결보존, 생쥐 배자, 독성, 침투성 동결보호제, DMSO, EG, Glycerol, 1,2-PROH)
Journal of Embryo Transfer 2015; 30(3): 195-200
Published online September 29, 2015 https://doi.org/10.12750/JET.2015.30.3.195
Copyright © The Korean Society of Animal Reproduction and Biotechnology.
김현1,2, 조상래3, 김동교1, 최창용1, 성환후1,†
Hyun Kim1,2, Sang-Rae Cho3, Dong Kyo Kim1, Changyong Choe1, and Hwan-Hoo Seong1,†
1Animal Genetic Resources Research Center, National Institute of Animal Science, RDA, Namwon 590-832, Korea,
2Dept. of Veterinary Physiology, Graduate School of Agricultural and Life Sciences, The University of Tokyo, Tokyo 113-8657, Japan,
3Hanwoo Research Station, National Institute of Animal Science, RDA, Pyeongchang 25340, Korea,
*본 논문은 농촌진흥청 공동연구사업(과제번호 PJ009418)에서 연구비를 지원 받았습니다.
Correspondence to:Corresponding author :
The objective of this study was to evaluate the toxicities of permeable cryoprotectants and finally to establish the cryopreservation method of surplus embryos obtained during assisted reproductive technology (ART). Toxicities of permeable cryoprotectants, dimethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol (EG), Glycerol, and 1,2-PROH were investigated using a murine embryo model. Female F-1 mice were stimulated with gonadotropin, induced ovulation with hCG and mated. Two cell embryos were collected and cultured after exposure to among DMSO, EG, Glycerol, and 1,2-PROH. Embryo development was evaluated up to the blastocyst stage. The total cell count of blastocysts that were treated with DMSO and Glycerol at the 2-cell stage was significantly lower than that were treated with EG (81.1±15.1), 1,2-PROH (88.0±21.1) or the control (99.9±21.3) (
Keywords: cryoprotectant, DMSO, EG, toxicity, embryo, apoptosis
초기배아를 비롯하여 세포나 조직, 개체 등과 같은 생물학 적 재료를 형태와 기능적인 변화가 일어나지 않은 상태로 저 온에서 장기간 보관하고, 필요한 시기에 융해하여 동결보호제 (cryoprotective agents: CPAs)를 제거한 후, 세포의 발달이 계 속 이뤄질 수 있는 생리적 환경상태로 되돌리는 과정을 동결보 존(cryopreservation)이라 한다(
동결 보존 후, 초기배아의 생존율에 있어 동결 방법만큼이 나 중요한 것은 동결 및 융해 과정 중에 사용되는 동결보호제 의 종류, 농도 및 처리 시간이다(
배양액은 glutamine(0.1 mM/ml)이 포함된 KSOM(Lawitts and Biggers, 1993)을 사용하였고, 침투성 동결보호제의 비교 대 상인 DMSO, EG, 1,2-PROH 그리고 Glycerol은 1.5 M Leibovitz- L15(Gibco BRL, UK)를 기본배양액으로 사용하였다. 모든 배양 액은 0.5% antibiotics(Streptomycine sulfate, S-9137; Penicillin- G, P-3032, Sigma, USA)를 첨가한 다음, 삼투압 측정기(Osmomat 030, Gonatec, German)를 이용하여 삼투압을 280 mOsmol/kg으 로 보정하였다. 삼투압을 보정하고 나서 0.2 μm의 여과기(Minisant 17597, Sartorius, Germany)로 제균하면서 14 ml tube (2001, Falcon, USA)에 분주한 다음 4℃에서 보관하였다. 배양액은 95 % 이상의 습도, 37℃ 및 5% CO2를 유지하고 있는 배양기(3154, Foma, USA)에서 6시간 이상 평형시킨 다음 이용하였다. 본 실 험에 이용된 그 외 시약들은 Sigma(St Louis, Mo, USA)사 제 품을 구매하여 사용하였다.
수정란 준비본 연구에 사용된 실험동물은 일본 도쿄대학교 농업생명과 학연구과 수의과학대학 동물실험 윤리위원회의 A-10-1214 승 인 하에 진행하였으며, 항온 및 항습이 유지되면서 낮 12시간, 밤 12시간이 조절되는 실험동물 사육실에서 물과 먹이를 자유 롭게 섭식시켜 사육한 ICR계 흰 생쥐를 사용하였다. 암컷은 생 후 5∼9주령을 사용하였고, 수컷은 11∼12주령의 생식능력이 확인된 것을 사용하였다. 난포 성장을 촉진시키기 위해 생후 6 주령의 암컷 F1 hybrid mice(C57BL ♀/6×CBA ♂) 생쥐에 10 IU의 PMSG(pregnant mare’s serum gonadotropin, Sigma)를 복 강 주사하여 과배란을 유도하였다. PMSG 주사 후, 48시간 때 10 IU의 hCG(human chorionic gonadotropin, Sigma)를 복강에 주사한 후, 수컷과 합사하여 교배를 유도하였다. 이튿날 아침 암컷의 질전을 통하여 교배 여부를 확인하고, 질전이 확인된 개 체만을 분리 사육하였다. hCG 주사 후, 48시간째에 교배가 확 인된 개체만을 경추탈골 방법으로 죽인 후, 외과적 수술 방법 으로 난관을 떼어내었다. 그리고 인슐린 주사기를 이용하여 난 관 관류법으로 2-세포기의 배아를 획득하였다.
배 발달을 위한 기본 배양액은 KSOM을 제조하여 사용하였 으며, 단백질원은 0.3% Bovine Serum Albumin(이하: BSA)를 첨가하여 사용하였다. 동결보호제의 독성 평가를 위한 배양액 은 Leibovitz-L15에 1% BSA를 포함한 기본 배양액에 각각의 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M 1,2-PROH 그리고 1.5 M Glycerol를 각각 첨가하여 사용하였다.
실험 30분전에 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M 1,2-PROH 와 1.5 M Glycerol의 배양액을 실내온도로 보정하였다. 획득한 2-세포기 수정란을 실온에서 60분 동안 각각의 동결보호제가 포함된 배양액에 넣어 처리하였다. 처리가 끝난 수정란은 배 발 달 배양접시(Tissue culture dish, 60×15 mm, Corning 25010) 로 옮기기 전에 배 발달 배양액에 3회 세척을 실시하여 수정 란에 남아있는 동결보호제를 깨끗이 제거한 후, KSOM 배양 액 20 μl 소적을 만들고, oil을 피복한 배양접시로 옮긴 후 37 ℃, 5% CO2 배양기 내에서 5일간 체외배양을 통해 배 발달을 유도하였다. 대조군은 동결보호제를 처리하지 않은 수정란을 이용하여 검토하였다.
2-세포기에서 얻은 수정란을 실온에서 60분 동안 동결보호 제에 노출한 후, 배양기로 옮겨 24시간 주기로 배반포 발생시 까지 배 발달율을 관찰하였다. 96시간 동안 배양하여 형성된 배반포는 bis-benzimide(Hoechst 33342)로 염색하여 세포수를 계수하여 배 발달율을 조사하였다. 동결보호제에 노출시킴으로 써 나타나는 배 발달율에 미치는 영향을 알아보고자 PMSG 주사 후 96시간을 기준으로 세포수가 50개 미만은 A군, 50∼80개 미만은 B군으로, 80개 이상인 C군으로 나누어서 분석하였다.
세포수 조사핵을 염색하기 위하여 bis-benzimide를 10 μg/ml로 희석하 여 빛이 차단된 곳에 배아를 5분간 처리한 후, 0.3% BSA가 함 유된 PBS로 3회 이상 세척한 후, 배아를 slide glass위에 mounting한 후, 형광현미경을 이용하여 관찰하였다.
통계적 분석본 시험에서 얻어진 모든 자료들의 통계 분석은 Statistical Analysis System(SAS release ver. 8.2, 2002)의 General Linear Model(GLM) procedure를 이용하여 분산분석을 실시하였고, 처 리구 간에 유의성은 Duncan’s multiple range-test(Duncan, 1955) 를 이용하여 5% 수준에서 검정하였으며, 각 요인들의 상관관 계의 유의성 검정은 Pearson’s correlation coefficient를 활용하 였고,
배 발달율은 대조군에서 92.0%가 정상적으로 발달하였으며, DMSO 처리군에서는 A군이 12.3%, B군이 33.8%, C군이 53.9 %로, EG 처리군에서는 A군이 7.7%, B군이 29.2%, C군이 63.1 %로, Glycerol 처리군에서는 A군이 11.1%, B군이 30.1%, C군 이 49.5%로, 1,2-PROH 처리군에서는 8.6%, 31.2%, 65.9%로 각각 나타났다. Fig. 1과 같이 정상 배 발달율은 대조군보다 동 결보호제 처리군(DMSO, EG, Glycerol, 1,2-PROH)에서 유의 하게 낮게 나타났으나(
Comparison of embryo development after 60 minutes exposure of 2-cell murine embryo to 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH. Data represent mean ± S.D.; a:
Comparison of hatching rates of embryos that were exposed to cryoprotectants at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± S.D.; a:
배반포 세포 수는 DMSO 처리군(65.0±13.0)과 EG 처리군 (81.1±15.1), Glycerol 처리군(62.1±27.0), 1,2-PROH 처리군(88.0 ±21.1) 모두 대조군(99.9±21.3)에 비해 유의하게 적게 나타났다 (
Comparison of total cell number of murine blastocysts which were treated with 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH, and Leibovitz solution (control) at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± SEM; a:
세포사멸된 세포수를 분석한 결과에서도 DMSO 처리군(14.7 ±1.3), EG 처리군(12.1±1.1), Glycerol 처리군(15.2±1.8)과 1,2- PROH 처리군(11.5±1.3) 모두 대조군(6.5±0.7)에 비해 유의하게 높게 나타났으며(
Comparison of the apoptotic rates of cells in blastocysts which were treated with 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH for 60 min at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± SEM; a:
포유류 및 인간배아의 동결보존 과정에서 성공률에 영향을 주는 요인들로는 동물의 종, 동결 시 배아의 발달단계와 배아의 형태(
일반적으로 세포는 세포주기에 따라 체크포인트를 두어 내 재적인 결함 등을 치유 및 회복하는 기전(
아직까지 동결보호제의 독성에 대해 많은 부분이 밝혀지지 않고 있으므로 동결보호제의 독성을 알아보는 연구가 추가되 어야 할 것으로 생각된다. 특히, 생식 세포(germ cells)에 대한 성장과 발달에 있어서 저해 효과를 최소화 할 수 있도록 분자 수준에서의 비치사성 동결보호제 손상을 밝힐 필요가 있다고 생각된다. 또한 동결보호제의 알려지지 않은 독성을 감소시키 기 위해서 가능하면 동결보호제에 노출되는 시간을 최소화하 는 것이 중요하다고 사료된다.
본 연구에서 배아의 생식세포 동결에 가장 흔히 쓰이고 있 는 침투성 동결보호제(DMSO, EG, Glycerol, 1,2-PROH)의 독 성을 비교하고자 생쥐 수정란 모델을 이용한 실험을 하였다. 생후 6주령의 암컷 생쥐 F1 hybrid mice에 10 IU의 PMSG를 복강 주사하여 과배란을 유도하고, 2-세포기 배아를 획득하고 침투성 동결보호제(DMSO, EG, Glycerol와 1,2-PROH) 각각 실 온에서 60분간 노출시킨 후, 배양을 하였다. 배반포의 전체 세 포수는 2-세포기 단계에서 DMSO(68.1±24.1), EG(68.1±24.1), Glycerol(81.2±27.0), 1,2-PROH(68.1±24.1) 침투성 동결보호제 처리군은 대조군에 비해 유의적으로(99.0±18.3)(
(중심 단어: 동결보존, 생쥐 배자, 독성, 침투성 동결보호제, DMSO, EG, Glycerol, 1,2-PROH)
Comparison of embryo development after 60 minutes exposure of 2-cell murine embryo to 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH. Data represent mean ± S.D.; a:
Comparison of hatching rates of embryos that were exposed to cryoprotectants at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± S.D.; a:
Comparison of total cell number of murine blastocysts which were treated with 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH, and Leibovitz solution (control) at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± SEM; a:
Comparison of the apoptotic rates of cells in blastocysts which were treated with 1.5 M DMSO, 1.5 M EG, 1.5 M Glycerol and 1.5 M 1,2-PROH for 60 min at the 2-cell embryo stage. Data represent mean ± SEM; a:

pISSN: 2671-4639
eISSN: 2671-4663